Микобиота коры сосны сосновых лесов г. Сургута и Сургутского района с разной степенью антропогенной нагрузки
Мария Викторовна Мантрова, младший научный сотрудник Научно-образовательного центра института естественных и технических наук
Сургутский государственный университет, Сургут, Россия, mantrova-mariya@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-7352-787X
Аннотация
Статья посвящена изучению комплексов микроскопических грибов коры сосны сосновых лесов парков города Сургута и контрольных участков Сургутского района. В составе микобиоты выявлен 41 штамм микроскопических грибов, относящихся к 11 видам, 7 родам: Daldinia Ces. & De Not., Fusarium Link, Mucor Fresen., Neurospora Shear & B. O. Dodge, Penicillium Link, Trichoderma Pers., Rhizopus Ehrenb.; также выделены представители группы Mycelia sterilia со светло- и темноокрашенным мицелием. В составе комплексов микромицетов коры сосны всех изученных территорий доминируют виды T. harzianum Rifai и N. dictyophora (R. S. Khan & J. C. Krug) Dania García, Stchigel & Guarro, а в сосняках парков также M. plumbeus Bonord. В микоценозе коры сосны парка «За Саймой» в числе доминантов обнаружен потенциальный патоген хвойных деревьев F. sporotrichioides Sherb., что может свидетельствовать о некотором фитосанитарном неблагополучии данного фитоценоза. В структуре комплексов микромицетов коры сосны исследуемых лесопарковых и контрольных территорий в основном преобладают сапротрофные микроскопические грибы, что указывает на благоприятное экологическое состояние данных участков. Небольшое количество видов в составе комплексов микромицетов коры сосны изученных территорий коррелирует с результатами ранее проведенных исследований микобиоты почвенной подстилки этих же участков. Согласно результатам кластерного анализа, комплексы микромицетов коры сосны по сходству видового состава сгруппированы в три блока — микромицеты коры сосны парков, контрольных участков, контрольного соснового леса за р. Малая Кучеминская. Предположительно, такое распределение связано с антропогенным фактором, влияющим на биоту в целом и микобиоту в частности. Антропогенное влияние сильнее выражено в парках — местах отдыха горожан, слабее — в сосняках контрольных участков, поблизости от которых обнаружены свалки мусора, а люди могут посещать эти леса для сбора ягод и грибов. Минимальная антропогенная нагрузка установлена в контрольном сосновом лесу за р. Малая Кучеминская в связи с удаленностью этого участка от дороги и отсутствием свалок мусора, но возможность посещения данного леса людьми не исключена. Актуальным является продолжение исследований комплексов эпифитных микромицетов не только коры, но и хвои сосны, а также эндофитных микромицетов этих же местообитаний с дальнейшим изучением почвенной микобиоты сосновых лесов с целью комплексной экологической оценки данных территорий в динамике.
Благодарности: Автор выражает благодарность доктору биологических наук, ведущему научному сотруднику кафедры микологии и альгологии МГУ Алине Витальевне Александровой за всестороннюю помощь при проведении микологических исследований и видовой идентификации микроскопических грибов, а также аспиранту кафедры Евгению Андреевичу Антонову за помощь в проведении молекулярных исследований. Работа выполнена при финансовой поддержке Департамента образования и науки Ханты-Мансийского автономного округа — Югры (приказ № 10-П-1534) в рамках выполнения государственного задания по проекту № 2023-227-03
Для цитирования:
Мантрова М. В. Микобиота коры сосны сосновых лесов г. Сургута и Сургутского района с разной степенью антропогенной нагрузки // Вестник Оренбургского государственного педагогического университета. Электронный научный журнал. 2024. № 4 (52). С. 6—25. URL: http://vestospu.ru/archive/2024/articles/52/1_52_2024.pdf. DOI: 10.32516/2303-9922.2024.52.1.
1. Александрова А. В. Почвообитающие микроскопические грибы: география и экология : автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 2013. 51 с.
2. Александрова А. В., Великанов Л. Л., Сидорова И. И. Ключ для определения видов рода Trichoderma // Микология и фитопатология. 2006. Т. 40, вып. 6. С. 457—468.
3. Алимова Ф. К. Промышленное применение грибов рода Trichoderma. Казань : Казан. гос. ун-т им. В. И. Ульянова-Ленина, 2006. 209 с.
4. Бакаева М. Д., Климина И. П., Киреева Н. А., Дубовик И. Е. Влияние условий городской экосистемы на аэрофильные микроскопические грибы древесной коры // Вестник Оренбургского государственного университета. 2010. № 2 (108). С. 111—113.
5. Благовещенская Е. Ю. Методы выявления грибов филлопланы // Биотические связи грибов: мосты между царствами : материалы VII Всерос. микологической школы-конференции с междунар. участием. 2—8 августа 2015 г., Москва / отв. ред. М. Ю. Дьяков. М. : ЗБС МГУ, 2015. С. 5—9.
6. Бондарь П. Н. Штаммы грибов рода Trichoderma (Pers.: Fr.) как основа для создания биопрепаратов защиты растений и получения кормовых добавок : автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2011. 22 с.
7. Великанов Л. Л., Сидорова И. И., Успенская Г. Д. Полевая практика по экологии грибов и лишайников. М. : Изд-во Моск. ун-та, 1980. 112 с.
8. Громовых Т. И. Фитопатогенные микромицеты сеянцев хвойных в Средней Сибири: Видовой состав, экология, биологический контроль : дис. … д-ра биол. наук. Красноярск, 2002. 362 с.
9. Громовых Т. И., Садыкова В. С., Алимова Ф. К. Микромицеты рода Trichoderma Pers.: Научное обоснование использования в технологиях агропромышленного комплекса. М. : МГУПП, 2014. 189 с.
10. Зеленская М. С., Сидельникова М. В., Панова Е. Г., Паутов А. А., Крылова Е. Г., Пагода Я. О., Власов Д. Ю. Грибы филлопланы в городской среде // Биосфера. 2017. Т. 9, № 2. С. 136—151. DOI: 10.24855/BIOSFERA.V912.353.
11. Каневская И. Г. Биологическое повреждение промышленных материалов. Л. : Наука, 1984. 232 с.
12. Лотова Л. И. Микроструктура коры основных лесообразующих лиственных деревьев и кустарников Восточной Европы. М. : КМК, 1998. 113 с.
13. Лугаускас А. Ю., Микульскене А. И., Шляужене Д. Ю. Каталог микромицетов — биодеструкторов полимерных материалов. М. : Наука, 1987. 340 с.
14. Мантрова М. В. Микобиота верхнего слоя подстилки сосняков парков г. Сургута в экологической оценке антропогенного влияния на данные территории // Самарский научный вестник. 2021. Т. 10, № 2. С. 66—77. DOI: 10.17816/snv2021102109.
15. Мантрова М. В. Почвенная микобиота сосняка парка «За Саймой» г. Сургута // Безопасный Север — чистая Арктика : сб. материалов V Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием. Сургут : СурГУ, 2023. С. 179—182.
16. Мантрова М. В. Сезонная динамика численности штаммов рода Trichoderma в структуре почвенных микоценозов сосняков парков города Сургута // Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование : материалы II Междунар. науч.-практ. конф. (Керчь, 27—30 мая 2020). Симферополь : Ариал, 2020. С. 146—153.
17. Марфенина О. Е. Антропогенная экология почвенных грибов. М. : Медицина для всех, 2005. 196 с.
18. Методы почвенной микробиологии и биохимии : учеб. пособие / под ред. Д. Г. Звягинцева. М. : Изд-во МГУ, 1991. 304 с.
19. Методы экспериментальной микологии : справочник / И. А. Дудка [и др.] ; под ред. В. И. Билай. Киев : Наукова думка, 1982. 550 с.
20. Микромицеты почв / под ред. В. И. Билай. Киев : Наукова думка, 1984. 264 с.
21. Милько А. А. Определитель мукоральных грибов. Киев : Наукова думка, 1974. 304 с.
22. Мирчинк Т. Г. Почвенная микология : учеб. М. : Изд-во МГУ, 1988. 220 с.
23. Неверова О. А., Цандекова О. Л. Изучение терпеновой фракции эфирного масла хвои сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.), произрастающей в условиях породного отвала Кедровского угольного разреза // Химия растительного сырья. 2017. № 2. С. 101—106. DOI: 10.14258/jcprm.2017021571.
24. Овчинникова Т. А., Кремс Е. В., Корчиков Е. С. Сезонная динамика микобиоты листовой поверхности древесных растений городской среды // Вестник Самарского государственного университета. 2013. № 6 (107). С. 188—195.
25. Садыкова В. С., Кураков А. В., Лихачев А. Н. Грибы рода Trichoderma Средней Сибири: видовой состав и использование в биотехнологии // Биоразнообразие и экология грибов и грибоподобных организмов Северной Евразии : материалы Всерос. конф. с междунар. участием (Екатеринбург, 20—24 апреля 2015 г.). Екатеринбург : Изд-во Уральского ун-та, 2015. С. 217—219.
26. Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов : пер. с англ. М. : Мир, 2001. 486 с.
27. Сенашова В. А. Эпифитная микрофлора и заболевания хвои у древесных видов Средней Сибири // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2009. № 6. С. 84—88.
28. Сенашова В. А., Громовых Т. И., Сорокин Н. Д. Эпифитная микрофлора здоровой и пораженной хвои древесных пород Средней Сибири // Лесоведение. 2012. № 4. С. 24—30.
29. Смирнов В. Ф., Кузьмин Д. А., Смирнова О. Н., Трофимов А. Н. Действие терпеноидов на физиолого-биохимическую активность грибов-деструкторов промышленных материалов // Химия растительного сырья. 2002. № 4. С. 29—33.
30. Третьякова И. Н., Садыкова В. С., Носкова Н. Е., Бондарь П. Н., Гайдашева И. И., Громовых Т. И., Иваницкая А. С., Ижболдина М. В., Барсукова А. В. Ростстимулирующая активность штаммов родов Streptomyces и Trichoderma и перспективы их использования для микроклонального размножения хвойных // Биотехнология. 2009. № 1. С. 39—44.
31. Ушанова В. М., Заика Н. А., Громовых Т. И. Альтернативные пути использования коры хвойных в различных технологиях // Химия и химическая технология. 2006. Т. 49, № 5. С. 72—77.
32. Хабибулина Ф. М., Кузнецова Е. Г., Васенева И. З. Микромицеты подзолистых почв в подзоне средней тайги на северо-востоке европейской части России // Почвоведение. 2014. № 10. С. 1228—1234.
33. Царелунга А. А., Благовещенская Е. Ю. Филлоплана как местообитание грибов // Журнал общей биологии. 2023. Т. 84, № 4. С. 263—278. DOI: 10.31857/S0044459623040073.
34. Шепелева Л. Ф., Шепелев А. И., Самойленко З. А. [и др.]. Почвы и растительность центральной части таежной зоны Западной Сибири (в пределах Ханты-Мансийского автономного округа) : учеб. пособие. Сургут : ИЦ СурГУ, 2010. 104 с.
35. Chunbo D., Zhang Z., Shao Q., Yao T., Liang Z., Han Y. Mycobiota of Eucommia ulmoides bark: Diversity, rare biosphere and core taxa // Fungal Ecology. 2021. Vol. 53, N 8. Art. 101090. DOI: 10.1016/j.funeco.2021.101090.
36. Davey M. L. Annellosporium nemorosum gen. et sp. nov., an annellidic anamorph with phylogenetic affinities to the genus Daldinia (Xylariales) // Karstenia. 2010. Vol. 50, N 1. P. 1—10. DOI: 10.29203/ka.2010.436.
37. Domsch K. H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of soil Fungi. München : Academic Press, 2007. 672 p.
38. Falconi C. J., Mendgen K. Epiphytic fungi on apple leaves and their value for control of the postharvest pathogens Botrytis cinerea, Monilinia fructigena and Penicillium expansum // Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz. 1994. Bd. 101, Heft 1. S. 38—47.
39. Food and Indoor fungi / R. A. Samson, J. Houbraken, U. Thrane, J. C. Frisvad, B. Andersen. Utrecht (The Netherlands) : CBS-KNAW Fungal Biodiversity Centre, 2010. 390 р.
40. Frisvad J. C., Samson R. A. Penicillium subgenus Penicillium: new taxonomic schemes and mycotoxins and other extrolites // Studies in Mycology. 2004. N 49. Р. 1—251.
41. Garcia D., Stchigel A. M., Cano J., Guarro J., Hawksworth D. L. A synopsis and re-circumscription of Neurospora (syn. Gelasinospora) based on ultrastructural and 28S rDNA sequence data // Mycological Research. 2004. Vol. 108, N 10. P. 1119—1142. DOI: 10.1017/S0953756204000218.
42. Gerlach W., Nirenberg H. The Genus Fusarium: a pictorial atlas. Berlin, Hamburg : Parey, 1982. 406 p.
43. Guarro J., Gené J., Stchigel A. M., Figueras M. J. Atlas of Soil Ascomycetes. Utrecht, the Netherlands, 2012. 486 p. (CBS Biodiversity Series. Vol. 10).
44. Hammer Ø., Harper D. A. T. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis // Palaeontologia Electronica. 2001. Vol. 4, N 1. Р. 1—9. URL: https://palaeo-electronica.org/2001_1/past/issue1_01.htm.
45. Hudson H. J. The development of the saprophytic flora as leaves senesce and fall // Ecology of leaf surface microtissueisms / ed. by T. F. Preece and G. H. Dichinson. New York : Academic Press, 1971. P. 447—455.
46. Index Fungorum. URL: https://indexfungorum.org (дата обращения: 31.07.2024).
47. Kharwar R. N., Gond S. K., Kumar A., Mishra A. A comparative study of endophytic and epiphytic fungal association with leaf of Eucalyptus citriodora Hook., and their antimicrobial activity // World Journal Microbiology and Biotechnology. 2010. Vol. 26, N 11. P. 1941—1948. DOI: 10.1007/s11274-010-0374-y.
48. Leslie J. F., Summerell B. A. The Fusarium Laboratory Manual. Ames (USA), Carlton, (Australia) : Blackwell Publishing, 2006. 416 p.
49. Mycobank Database. Fungal Databases, Nomenclature & Species Banks. URL: https://www.mycobank.org (дата обращения: 31.07.2024).
50. Piasai O., Sudsanguan M. Morphological study of Gelasinospora from dung and antagonistic effect against plant pathogenic fungi in vitro // Agriculture and Natural Resources. 2018. Vol. 52. P. 407—411.
51. Stadler M., Laessøe T., Fournieret J. [et al.]. A polyphasic taxonomy of Daldinia (Xylariaceae) // Studies in Mycology. 2014. Vol. 77. P. 1—143.
52. Wang Y., Guo L.-D. A comparative study of endophytic fungi in needles, bark, and xylem of Pinus tabulaeformis // Canadian Journal of Botany. 2007. Vol. 85. P. 911—917.